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复合胁迫对大田作物影响和相关指标推荐
2025-10-14

农业生产不仅需要面对单一环境胁迫(如干旱、高温、低温、盐碱等),还要应对多种胁迫同时作用的复合胁迫环境。与单一胁迫的效应可预测、机制相对明确不同,复合胁迫对大田作物的影响绝非简单的效应叠加。例如,干旱与高温这对“孪生逆境”常协同作用,加速作物水分亏缺与代谢紊乱;而一次病虫害的侵袭,足以大幅削弱作物抵御后续干旱或盐碱胁迫的基础能力。


一.复合胁迫对大田作物影响研究

在全球气候变化和农业集约化生产的双重影响下,大田作物常常面临多种非生物胁迫的复合作用,其中盐碱胁迫与低温胁迫的共存尤为普遍且危害严重[1]。据联合国粮农组织(FAO)统计,全球盐碱地面积已达总土地面积的10.7%,而中国盐碱土面积亦高达9.91×107公顷,主要分布于东北、华北及西北地区[2]。这些区域冬季寒冷漫长,土壤盐碱化与低温冻害频繁叠加,导致作物生长受阻、产量下降,严重威胁粮食安全与农业可持续发展。

盐碱胁迫通过离子毒害、高pH效应及渗透胁迫破坏植物细胞结构,抑制光合作用并干扰活性氧(ROS)平衡;低温胁迫则通过冰晶形成损伤细胞膜,降低酶活性并引发代谢紊乱[3]。当两种胁迫同时发生时,其作用机制并非简单叠加,而是通过复杂的信号交互与代谢调控产生协同效应。例如,盐胁迫可能加剧低温下的膜脂过氧化,而低温诱导的代谢变化也可能改变植物对盐胁迫的响应模式。然而,目前关于复合胁迫的研究多集中于实验室模拟条件,对大田环境下作物响应机制的理解仍十分有限[4]

紫花苜蓿(Medicago sativa L.)作为全球重要的优质豆科牧草,以其高蛋白含量和良好的适口性被誉为“牧草之王”,但其在我国东北盐碱地区的栽培常因冬季低温与土壤盐碱的双重胁迫导致越冬失败。尽管已有研究揭示了单一胁迫下苜蓿的生理响应(如渗透调节物质合成、抗氧化酶活性变化等),但复合胁迫下其分子与代谢层面的协同调控机制仍不明确。传统研究多关注地上部表型变化,对根系在复合胁迫中的核心作用及代谢物积累特征缺乏系统解析。此外,现有模型多基于可控环境试验,难以完全反映大田中作物实际面临的动态胁迫条件。

研究以耐盐碱型苜蓿品种Zhao dong(ZD)和敏感型品种Blue Moon(BM)为材料,通过大田试验结合转录组与代谢组学技术,系统解析了盐碱与低温复合胁迫下苜蓿的响应差异。研究发现,ZD品种在胁迫条件下能特异性积累异亮氨酸、延胡索酸、棉子糖等关键代谢物,且相关基因表达量显著高于BM品种;同时,WGCNA分析进一步识别了10个响应复合胁迫的核心基因(如MsBAM1),其功能涉及淀粉降解与糖类合成调控,RNA干扰实验证实该基因沉默后苜蓿对复合胁迫的抗性显著降低。这些结果不仅揭示了苜蓿对复合胁迫的适应性机制,也为盐碱地农业中抗逆品种选育及可持续利用提供了理论依据。

研究的创新点在于:1)大田环境下复合胁迫的动态特征:通过连续监测10月(盐碱+冷驯化期)与12月(盐碱+冻害期)的胁迫强度变化,发现ZD品种通过积累总黄酮、脯氨酸及可溶性糖等代谢物增强抗性,而BM品种因丙二醛(MDA)与过氧化氢(H2O2)含量激增导致膜系统受损更严重;2)地上部与根系的差异化响应:ZD地上部虽提前黄化,但根系长度和干鲜重显著高于BM,且总黄酮与可溶性糖积累量更高,表明其通过资源分配优化(如降低地上部生长竞争)增强越冬能力;3)多组学关联分析揭示了碳水化合物、谷胱甘肽及水杨酸(SA)代谢通路的核心作用,例如淀粉降解产生的葡萄糖、果糖等既是渗透调节物质,也参与SA合成前体代谢,这为协同调控提供了代谢物-基因的关联证据。

综上,研究通过整合大田环境下作物形态、生理、代谢与基因的多维度数据,首次明确了苜蓿应对复合胁迫时,根系作为代谢物储备库及抗氧化系统的核心器官,其动态调整能力是决定品种抗逆性的关键;代谢物-基因共调控网络中,淀粉-糖代谢、抗氧化系统及植物激素信号传导(如SA)途径的激活,共同构成了苜蓿对复合胁迫的响应枢纽。这些发现不仅深化了对作物抗逆机制的理解,也为盐碱地利用及冷季作物栽培提供了重要参考。

盐碱与低温复合胁迫推荐指标

在复合胁迫(如盐碱与低温)条件下,大田作物的响应机制可通过多项关键指标进行综合评估[5]。首先,叶绿素含量作为光合作用效率的直接反映,其动态变化可通过分光光度法或叶绿素荧光成像技术监测,揭示胁迫对光合系统的潜在损害。其次,渗透调节物质如可溶性糖和脯氨酸的积累,作为植物应对逆境的重要策略,其含量可通过比色法或高效液相色谱法精确测定,其中可溶性糖不仅作为渗透保护剂维持细胞膨压,还参与能量供应和信号传导,而脯氨酸则通过稳定蛋白质结构来增强抗逆性。进一步地,抗氧化系统相关指标,包括超氧化物歧化酶(SOD)、过氧化氢酶(CAT)活性及丙二醛(MDA)、过氧化氢(H2O2)含量,通过生化分析方法量化,能够全面评估植物在胁迫下的氧化应激状态及抗氧化防御能力。最后,代谢组学与转录组学指标通过LC-MS等高通量技术结合生物信息学分析,揭示差异代谢物积累模式与关键基因表达变化,如半乳糖代谢、淀粉和蔗糖代谢及黄酮类生物合成等通路的激活,为深入理解作物胁迫响应机制提供了分子层面的证据。综上所述,这些指标的综合应用为评估复合胁迫对大田作物的影响提供了多维度、深层次的视角。

合作文献
代谢-转录组学分析揭示了紫花苜蓿对田间盐碱复合胁迫和低温胁迫的适应性
复合胁迫对大田作物影响和相关指标推荐

期刊名称:Plant Biotechnology Journal

影响因子:10.5

DOI:https://doi.org/10.1111/pbi.70356

1.研究内容
本研究以盐碱和低温复合胁迫下紫花苜蓿的适应性机制为核心,采用代谢组学与转录组学整合分析策略,系统解析了耐盐碱型苜蓿品种Zhao dong(ZD)和敏感型苜蓿品种Blue Moon(BM)的响应差异。研究首先通过田间表型观察发现,ZD在低温胁迫下通过强化根系生长(根长增加18.45%-68.50%)和积累渗透调节物质(可溶性总糖、脯氨酸)维持细胞活力,而BM的丙二醛(MDA)和过氧化氢(H₂O₂)含量显著升高,表现出膜脂过氧化损伤。进一步代谢组分析揭示,ZD在胁迫下特异性积累异黄酮、棉子糖等核心代谢物(log₂FC≥1.2),其中棉子糖作为渗透保护剂可降低细胞冰点,异黄酮则通过清除活性氧(ROS)缓解氧化胁迫。转录组数据表明,ZD中黄酮类合成通路(CHSCHI基因)、淀粉降解通路(BAM1AMY基因)及谷胱甘肽代谢通路(G6PDHGR基因)显著上调,与代谢物积累趋势高度一致。通过WGCNA共表达网络分析,筛选出MsBAM1等10个核心调控基因,其功能涉及糖代谢调控(TPS1GolS2)、ROS清除(G6PDHGR)及逆境信号转导(MYB2ABF2)。基因编辑实验证实,MsBAM1基因沉默导致β-淀粉酶活性下降62.3%,可溶性总糖含量减少41.7%,植株抗逆性显著降低,从而验证了碳水化合物代谢在盐碱和低温复合胁迫响应中的核心作用。本研究首次揭示了紫花苜蓿通过“黄酮类抗氧化-糖代谢渗透调节-GSH解毒”协同机制适应盐碱和低温胁迫的分子网络,为抗逆品种选育和盐碱地利用提供了理论依据。
复合胁迫对大田作物影响和相关指标推荐

图1.模型图展示了紫花苜蓿在应对盐碱与低温复合胁迫时的生理及分子机制:左上角(转录组)展示了通过WGCNA筛选出的10个核心基因;左下角(代谢组),彩色圆圈代表不同的代谢物类别,圆圈的大小表示代谢物含量的高低,越大则含量越高;右上角(形态学),箭头指示了显著增强的形态学参数,包括鲜重(FW)和干重(DW);右下角(生理学),三角形代表生理指标,颜色深浅表示指标含量的高低,其中SS代表可溶性总糖,Pro代表脯氨酸,TFC代表总黄酮含量,MDA代表丙二醛。

2.研究结果

(1)紫花苜蓿耐盐碱和低温响应机制:表型与生理适应性的品种差异研究

通过田间试验结合生理生化分析,系统比较了ZD和BM在盐碱土低温胁迫下的响应差异。方法上,采用定期采样监测生长动态(2022年8-12月),测定表型指标(株高、根长、生物量)及生理指标(脯氨酸、可溶性总糖、总黄酮、H2O2、MDA、根系活力),并通过单因素方差分析评估显著性。结果显示,ZD虽地上部分生长受抑制,但通过显著增强根系补偿生长(根长增加18.45%-68.50%)和地下部分生物量积累(根鲜重/干重较BM高3.55倍),有效维持整体活力;同时,ZD通过高效积累渗透调节物质(可溶性总糖含量较BM高2.81倍)和抗氧化物质(总黄酮含量高1.19-1.49倍),显著降低膜脂过氧化水平(MDA含量较BM低68.50%),并保持较高的根系活力(12月较BM高3.55倍),从而形成“渗透调节-抗氧化-根系优化”的综合抗逆机制。相比之下,BM因抗氧化能力弱和根系功能衰退,表现出显著的胁迫敏感性。研究为盐碱地紫花苜蓿品种选育提供了表型与生理层面的关键依据。

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2.展示了在低温条件下,种植于盐碱土中的紫花苜蓿品种ZD和BM的田间表型、生物量及生理指标的变化:(a)2022年8月和10月ZD与BM在盐碱土中生长的田间表型对比;(b)植株高度;(c)根长;(d)地上部分鲜重;(e)根鲜重;(f)地上部分干重;(g)根干重;(h)脯氨酸含量;(i)总黄酮含量;(j)可溶性糖含量;(k)过氧化氢含量;(l)丙二醛含量;(m)根系活力。

(2)盐碱与低温胁迫下紫花苜蓿品种代谢响应差异

通过非靶向代谢组学技术结合多元统计分析,系统比较了ZD与BM在盐碱与低温复合胁迫下的代谢响应差异。研究采用LC-MS平台对根组织样本进行代谢物全谱检测,在10月(冷驯化期)和12月(冰冻期)共鉴定出4605个差异积累代谢物(DAMs),涵盖14大类物质;通过分析表明,ZD在12月显著富集的代谢物数量(703个)较BM(345个)多1倍,且以黄酮类、含氧化合物为主,而BM的脂肪酸类代谢物显著减少。进一步KEGG富集分析揭示,ZD的苯丙烷类、异黄酮及黄酮醇生物合成通路在胁迫期间持续激活,特异性积累异亮氨酸、富马酸、棉子糖等渗透调节物质和抗氧化成分,而BM的同类通路代谢物含量大幅下降;动态比较表明,ZD通过强化碳水化合物(如棉子糖、葡萄糖)降解供能和黄酮类物质清除ROS协同机制增强抗逆性,而BM因代谢调节能力不足导致膜脂过氧化加剧和根系功能衰退。该结果阐明了代谢物动态变化与品种抗逆性分化的直接关联,为盐碱地紫花苜蓿抗逆机制解析提供了代谢层面的关键证据。

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3.展示了在盐碱与低温复合胁迫下,ZD与BM两个紫花苜蓿品种间差异积累代谢物(DAMs)的数量及分类统计,连接带的颜色根据代谢物类型进行区分。

(3)ZD与BM品种差异及抗逆机制关联

通过Venn图分析与热图可视化,系统筛选了ZD与BM在盐碱和低温复合胁迫下的核心差异代谢物(Core DAMs),发现ZD在胁迫期间特异性积累89个核心代谢物,涵盖氨基酸、有机酸、碳水化合物、脂肪酸及黄酮类等五大类,其相对丰度显著高于BM,尤其在冰冻期黄酮类与含氧化合物积累量较BM多1倍以上,而BM的脂肪酸类代谢物显著减少;进一步分析表明,ZD通过棉子糖等渗透调节物质维持细胞水分平衡、异黄酮等抗氧化成分清除ROS、以及淀粉降解产物(葡萄糖)提供能量供应的协同机制增强抗逆性,而BM因代谢调节能力不足导致膜脂过氧化加剧(MDA含量较ZD高68.50%)和根系功能衰退,该结果揭示了核心代谢物动态积累模式与品种抗逆性分化的直接关联,为盐碱地紫花苜蓿抗逆品种选育提供了关键代谢标志物。

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4.在盐碱与低温复合胁迫下,ZD和BM两个紫花苜蓿品种的核心代谢物。通过韦恩图分析,鉴定了ZD在复合胁迫条件下(10月和12月)上调的差异代谢物;热图则展示了ZD和BM中核心代谢物的相对丰度。

(4)转录组多维度分析揭示紫花苜蓿抗逆品种对盐碱和低温复合胁迫的特异性响应机制

通过主成分分析、韦恩图分析及KEGG富集分析三种方法,系统解析了ZD在盐碱与低温复合胁迫下的转录调控机制。首先,PCA分析显示不同品种及采样时间的转录组数据存在显著分离,表明复合胁迫下基因表达模式具有品种特异性;其次,韦恩图筛选出ZD在10月(盐碱-冷驯化胁迫)和12月(盐碱-冻结胁迫)较9月对照特异上调的差异基因(分别达3717个和5630个),其表达水平显著高于敏感品种BM;最后,KEGG富集分析揭示这些核心基因高度富集于半乳糖代谢、淀粉与蔗糖代谢、黄酮类生物合成等通路,表明ZD通过激活碳水化合物合成(如棉子糖、海藻糖)和黄酮类物质积累(如异荭草苷)来增强抗逆性。研究结论证实,ZD的抗逆性源于其对复合胁迫的特异性转录重编程,尤其通过代谢通路协同调控实现渗透保护与抗氧化防御。

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5.转录组数据的整体分析:(a)主成分分析,其中x轴和y轴分别代表PC1和PC2的得分;(b)韦恩图分析,用于鉴定在10月和12月复合胁迫条件下相对于9月对照,ZD品种中特异上调的差异表达基因;(c)核心基因的KEGG富集分析。

(5)WGCNA分析揭示枢纽基因与核心代谢物的共表达网络及关键调控基因

这部分内容主要采用了加权基因共表达网络分析(WGCNA)的研究方法,通过构建基因共表达网络,识别出15个基因共表达模块;进一步分析了这些模块与核心代谢物含量之间的关系,发现MEturquoise模块与核心代谢物含量显著正相关;最终筛选出包括MsBAM1在内的10个枢纽基因,这些基因在应对盐碱和低温复合胁迫中起到关键调控作用,并通过构建基因共表达网络揭示了它们之间的相互作用关系。

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6.加权基因共表达网络分析(WGCNA)结果。(a)基因共表达网络软阈值的确定。(b)基因共表达模块的聚类树状图,其中主分支形成了15个用不同颜色标记的模块。(c)模块与核心代谢物含量之间的关系,其中每行和每列分别代表一个模块和一个代谢物。(d)在联合胁迫条件下核心基因的共表达网络。

(6)转录组与代谢组联合分析揭示ZD品种抗逆性增强的分子机制

采用转录组与代谢组联合分析的研究方法,通过对比ZD和BM在碳水化合物、谷胱甘肽、黄酮类及水杨酸代谢途径中的基因表达和代谢物含量差异,发现ZD在这些途径中表现出更高的基因表达活性和代谢物积累量,特别是在冷应激和盐碱胁迫下,ZD能显著上调与糖合成、谷胱甘肽合成及黄酮类合成相关的基因(如TPSGALM、GolS2GSGRCHS等),从而增强了其抗逆性。

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图7. ZD与BM在碳水化合物、谷胱甘肽、黄酮类化合物及水杨酸相关代谢途径中基因表达与代谢物含量的差异。(a)碳水化合物相关途径。(b)谷胱甘肽代谢相关途径。(c)黄酮类化合物代谢相关途径。(d)SA生物合成与信号转导途径。在热图中,每一行代表一个基因或代谢物,而六列则分别代表来自不同月份的ZD与BM样本。红色和蓝色热图表示基因表达丰度,而橙色和绿色热图则代表代谢物的相对丰度。酶注释说明:GALM为半乳糖变旋酶;GolS2为肌醇半乳糖苷合成酶2;RFS为棉子糖合成酶;TPS为海藻糖-6-磷酸合成酶;AMY为α-淀粉酶;BAM为β-淀粉酶;GS为谷胱甘肽合成酶;GR为谷胱甘肽还原酶;G6PD为葡萄糖-6-磷酸1-脱氢酶;PGD为6-磷酸葡萄糖酸脱氢酶;GPX为谷胱甘肽过氧化物酶;CHS为查尔酮合成酶;CA4H为肉桂酸-4-羟化酶;CHR为查尔酮还原酶;CHI为查尔酮异构酶;PAL为苯丙氨酸解氨酶。

(7)MsBAM1-RNAi转基因苜蓿抗逆性评估:生理生化指标与光合性能分析

采用RNA干扰(RNAi)技术结合生理生化指标测定的研究方法,通过构建MsBAM1基因沉默的转基因紫花苜蓿植株,并对其进行冷应激和盐碱复合胁迫处理,发现MsBAM1-RNAi植株的β-淀粉酶活性、可溶性总糖含量显著降低,而总淀粉含量、丙二醛含量、超氧阴离子水平和电解质渗漏率显著升高,同时光合性能(Fv/Fm、ETR、φPSII)下降,表明MsBAM1基因在紫花苜蓿抵抗冷应激和盐碱复合胁迫中发挥关键作用,其沉默显著降低了植株的抗逆性。

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图8. MsBAM1-RNAi苜蓿降低了对复合胁迫的耐受性。(a)MsBAM1-RNAi苜蓿在复合胁迫条件下处理7天后的表型变化,比例尺为10厘米。(b)β-淀粉酶的活性水平。(c)可溶性糖的含量。(d)淀粉的含量。(e)丙二醛(MDA)的含量。(f)超氧阴离子(O2)的含量。(g)电解质渗漏情况。(h)伪彩色荧光图像,根据右侧显示的0至1的刻度进行颜色编码。(i)光系统II的最大光化学效率(Fv/Fm值)。(j)电子传递速率(ETR)。(k)光系统II的实际光化学效率(φPSII)。数据为平均值±标准误(n=3)。带有不同字母的条形表示在p<0.05水平上存在显著差异。


3.结论

本研究通过整合转录组学与代谢组学技术,深入解析了紫花苜蓿(Medicago sativa L.)在盐碱与低温复合胁迫下的分子响应机制。研究结果表明,抗性品种ZD通过多层次的代谢调控与基因表达网络显著增强了其对复合胁迫的适应能力。具体而言,ZD在胁迫条件下特异性积累了异亮氨酸、延胡索酸、棉子糖等核心代谢物,并通过上调糖酵解/糖异生、黄酮类生物合成及谷胱甘肽代谢等关键途径的基因表达,构建了强大的抗氧化防御系统与渗透调节机制。

检测指标
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参考文献:

[1]周广生,王晶,蒯婕,等.专辑导读:加强大田经济作物栽培措施与环境/资源配置的互作研究、推动产业高效优质发展[J].学报,2021,47(09):1633-1638.

[2]刘嘉斌,田军仓.基于国内外盐碱地改良的科技文献可视化分析[J].宁夏工程技术,2022,21(04):317-325.

[3]王芳,王淇,赵曦阳.低温胁迫下植物的表型及生理响应机制研究进展[J].分子植物育种,2019,17(15):5144-5153.

[4]曲悦,王姝瑶,郝鑫,等.盐胁迫诱导植物交叉适应及其信号转导[J].植物生理学报,2022,58(06):1045-1054.DOI:10.13592/j.cnki.ppj.300027.

[5]孟天瑶,朱旺,汪璐璐,等.水稻产量形成对盐-旱复合胁迫的响应与生理机制[J].扬州大学学报(农业与生命科学版),2024,45(01):18-26.