无籽刺梨果实生长发育期间,其形态特征会发生显著变化。从RS1期(开花前7天)到RS4期(开花后28天),果实持续膨大,颜色由深绿色逐渐转变为浅绿色(图1A)。研究收集了RS1至RS4期的样品,以探究内源激素的动态变化。结果表明,随着果实发育,吲哚乙酸(IAA)和茉莉酸(JAs)的含量逐渐下降。并在RS3期和RS4期维持在低水平(图1B、G)。细胞分裂素(CTKs)、脱落酸(ABA)和水杨酸(SAs)的含量起初呈上升趋势,在盛花期达到峰值后逐渐下降(图1D-F)。赤霉素(GAs)在前期两个阶段含量极低,但从坐果期开始显著升高(图1C),这表明GAs参与无籽刺梨果实的生长发育过程。
图1.无籽刺梨四个果实发育阶段的形态特征和激素含量。(A)子房/果实的四个发育阶段。(B-G)分别为IAA、GAs、CTKs、ABA、SAs和JAs的含量。RS1-RS4分别表示开花前7天的子房、盛花期的子房、开花后14天的果实和开花后28天的果实。数据为三次生物学重复的平均值±标准差(SD),同一图中不同字母表示差异显著(P<0.05)。为进一步探究GAs与无籽刺梨坐果的关系,在开花前对花朵进行去雄处理,随后分别喷施GA₄₊₇、多效唑(PAC,一种赤霉素合成抑制剂)和蒸馏水(对照),观察其对坐果和果实发育的影响。结果显示,处理后14天(DAT),PAC处理组的幼果开始脱落,坐果率降至48.88%。处理后30天,GA₄₊₇、PAC和H2O处理组的坐果率分别为95.56%、17.78%和88.89%,PAC处理组坐果率大幅下降。处理后45天,GA₄₊₇和H2O处理组的坐果率仍高达93.33%和82.22%,而PAC处理组的果实全部脱落(图2A)。因此,无籽刺梨具有较强的天然单性结实能力,且GAs在坐果过程中发挥重要作用。
从处理后7天至21天,对不同处理组的果实大小和细胞大小进行观察。GA₄₊₇处理组的果实直径和重量显著大于H2O处理组,而H2O处理组又优于PAC处理组。GA₄₊₇和H2O处理组的果实持续膨大,而PAC处理组的果实在处理后7天达到最大尺寸,随后停止生长并脱落(图2B-C、E)。此外,不同处理组的细胞大小存在显著差异。在相同检测阶段,GA₄₊₇处理组的细胞尺寸更大(图2D),尽管未观察到显著的细胞分裂,但仍形成了更大的果实。相反,PAC处理组的果实细胞尺寸小于GA₄₊₇和H2O处理组(图2D)。在果实成熟阶段,GA₄₊₇处理组的果实成熟更早,且果实大小显著大于H2O处理组(图2F)。综上,GAs对无籽刺梨果实发育也具有重要作用。
图2.GA对无籽刺梨坐果率和果实发育的影响。(A)H2O、GA₄₊₇和PAC处理后的坐果率。(B)果实直径。(C)单果重量。(D)果实细胞大小。(E)H2O(左)、GA₄₊₇(中)和PAC(右)处理后的果实形态。(F)H2O和GA₄₊₇处理后的成熟果实。数据为三次生物学重复的平均值±标准差,同一图中不同字母表示差异显著(P<0.05)。通过对无籽刺梨果实四个发育阶段的转录组测序,共鉴定出113310个基因。相邻阶段差异表达基因(DEGs)的显著性分析表明,盛花期(RS2)与坐果初期(RS3)之间的差异表达基因数量最多,达8279个,其次是RS3与RS4之间的4329个,而RS1与RS2之间的差异表达基因最少,仅431个(图3A)。对盛花期(RS2)与坐果初期(RS3)之间的差异表达基因进行GO和KEGG富集分析。GO富集分析的前20个显著条目主要归类于生物学过程(BP),这些差异表达基因主要参与生物合成与分解过程、细胞壁组织和细胞发育过程,与坐果密切相关(图3B)。
KEGG富集分析显示,盛花期和坐果初期的DEGs主要集中在类黄酮生物合成、二萜类生物合成和植物激素信号转导等通路(图3C)。此外,对前20个KEGG通路进行富集弦图分析,结果表明大多数基因分布在不同通路中,参与多种生物学过程。例如,基因TRINITY_DN5137_c0_g1(芳香族氨基酸转氨酶)参与异喹啉生物碱生物合成、三肽、哌啶和吡啶生物碱生物合成、苯丙氨酸代谢以及醌和其他萜类-醌衍生物的生物合成等多个通路(图3D)。本研究深入分析了二萜类生物合成通路,以阐明GA生物合成通路中相关基因的表达模式。
对RS2和RS3阶段的KEGG富集分析发现,RsGA3ox基因在GA₁和GA₄生物合成通路中显著上调,这与盛花期至坐果初期GA含量的变化趋势一致,表明RsGA3ox在GA生物合成中可能发挥作用(图3E)。此外,对RsGA3ox在四个阶段的表达模式进行定量分析,发现其在RS1和RS2阶段无显著变化,而从RS2到RS4阶段显著上调(图3F)。随后,分析了RsGA3ox在H2O、GA₄₊₇和PAC处理下的表达模式。结果显示,GA₄₊₇处理组的RsGA3ox在处理后7天上调,并持续至14天,而PAC处理组的RsGA3ox表达水平始终维持在极低水平(图3G),表明RsGA3ox在该果树的果实生长和发育中具有重要功能。
图3.无籽刺梨差异表达基因的富集分析及RsGA3ox基因的表达模式。(A)四个阶段的差异表达基因统计。(B)RS2与RS3之间差异表达基因的GO富集分析。(C)RS2与RS3之间差异表达基因的KEGG富集分析。(D)RS2与RS3之间差异表达基因的KEGG富集弦图分析。(E)赤霉素生物合成通路及相关基因的转录组表达热图。(F)RsGA3ox在四个阶段的相对表达水平。(G)RsGA3ox在H2O、GA₄₊₇和PAC处理下的表达模式。数据为三次生物学重复的平均值±标准差,同一图中不同字母表示差异显著(P<0.05)。
为阐明在果实生长发育中起关键作用的基因,基于无籽刺梨全基因组数据,对赤霉素氧化酶基因(GAoxs)家族成员进行了鉴定。共从无籽刺梨中鉴定出43个GAoxs家族成员,分为三个亚家族:14个RsGA2ox(赤霉素2-氧化酶)成员、14个RsGA3ox(赤霉素3-氧化酶)成员和15个RsGA20ox(赤霉素20-氧化酶)成员(图4A)。根据它们在染色体上的位置,分别命名为RsGA2ox1至RsGA2ox14、RsGA3ox1至RsGA3ox14以及RsGA20ox1至RsGA20ox15。染色体分布分析显示,RsGAoxs分布在14条染色体中的13条上,仅A5染色体上没有分布。A7和B7染色体上的RsGAoxs数量最多。利用无籽刺梨的43个GAoxs成员以及拟南芥、水稻、葡萄和苹果的GAoxs成员构建系统发育树,结果表明所有成员聚类为不同的亚家族,且无籽刺梨的GAoxs数量与苹果接近,显著高于其他三个物种,表明无籽刺梨和苹果相比其他物种具有更强的GA生物合成和代谢潜力(图4B)。随后,对43个RsGAoxs的7个重要指标(氨基酸数量、分子量、等电点、不稳定指数、脂肪族指数、亲疏水性和亚细胞定位)进行了预测,这些信息为深入了解这43个基因的分子特征提供了关键见解,并为后续研究提供了理论基础。
对43个成员的基因结构分析显示,大多数基因缺乏5'非翻译区(UTRs),编码序列(CDS)主要在1500bp以内。保守结构域分析表明,每个主要的RsGAox亚家族都含有特定的保守结构域:RsGA2ox和RsGA20ox各含有两个特定保守结构域,而RsGA3ox含有四个特定保守结构域。顺式作用元件分析表明,在这些基因的2000bp上游区域存在多个与激素响应密切相关的元件,包括赤霉素响应元件、MYB结合位点、生长素响应元件和脱落酸响应元件(图4C)。同时,对43个RsGAoxs的表达模式(TPM)进行分析,结果显示RsGA2oxs基因在坐果初期表达水平较低,而在后期表达水平较高。相反,RsGA3oxs和RsGA20oxs的表达水平在前期较高,后期降低。这表明RsGA3oxs和RsGA20oxs与果实发育趋势一致,可能对无籽刺梨果实发育有贡献。
图4.无籽刺梨赤霉素氧化酶基因(GAoxs)家族的全基因组鉴定。(A)GAoxs家族成员的鉴定。(B)无籽刺梨RsGAoxs与拟南芥、水稻、葡萄和苹果GAoxs基因的系统发育树。(C)RsGAoxs的基序、保守结构域、顺式作用元件和基因结构分析。
为探究RsGAoxs的共线性,基于基因组数据进行了种间和种内共线性分析。结果表明,水稻与无籽刺梨的共线基因对最少,仅6对,分布在水稻的1号染色体上。相反,拟南芥与无籽刺梨共享16个共线基因对,分布在1、2、4和5号染色体上,其中1号染色体上的分布最为集中(图5A)。月季和刺梨与无籽刺梨的共线性关系更为广泛,分别有37和39对共线基因对。值得注意的是,刺梨表现出最密切的共线性,共线基因的染色体位置和顺序高度保守(图5A)。
随后对无籽刺梨的自我共线性分析显示,30个基因存在共线性关系,其中大多数源于A组和B组染色体之间的复制事件。值得注意的是,RsGA2ox5、RsGA2ox6、RsGA2ox7和RsGA2ox14的共线性仅发生在4号和6号染色体之间,这可能由于基因扩增导致(图5B)。同时,计算了刺梨、无籽刺梨和月季之间RsGAoxs的同义替换率(Ks),以模拟这三个物种的全基因组复制(WGD)事件。结果显示,在-0.5至0.5之间存在一个显著的峰值,表明这三个物种共享一个重要的基因复制事件,可能与祖先真双子叶植物的辐射分化一致。此外,在2至2.5之间存在一个次要峰值,与之前基于全基因组分析报道的WGD时间线相比略有延迟(图5C),表明蔷薇属中RsGAoxs的复制时间较晚。
图5.无籽刺梨GAoxs家族的共线性分析。(A)RsGAoxs与拟南芥、水稻、月季和刺梨的全基因组共线性分析。(B)RsGAoxs的自我共线性分析。(C)刺梨、无籽刺梨和月季之间GAoxs的同义替换率(Ks)分布。
为鉴定RsGA3ox家族的特定成员,进行了序列比对,鉴定出RsGA3ox9,其与之前的候选基因RsGA3ox具有100%的序列一致性。为验证RsGA3ox9与单性结实的关联,通过番茄过表达和无籽刺梨病毒诱导基因沉默(VIGS)实验进行了功能分析。使用CaMV35S启动子,经过筛选、分化和生根过程,再生出完整的转基因植株。共获得10个转基因株系(OE-1至OE-10,分别表示番茄过表达株系1-10)(图6A),选择其中三个RsGA3ox9表达水平极高的株系(OE-2、OE-7和OE-9)进行进一步分析(图6B)。在开花前两天,对转基因植株和野生型(WT)的花朵进行去雄处理,以观察表型。结果表明,在不去雄处理下,转基因植株和野生型植株均能正常结果,表型无显著差异(表1)。相反,在去雄处理下,野生型的子房迅速脱落,无法形成果实,而转基因植株的子房能够继续正常发育形成无籽果实(图6C)。然而,去雄处理的转基因植株与不去雄对照相比,坐果率较低(平均为10.2-17.3%),果实重量也较小(平均为1.25-1.27g)(表1)。
为直接验证RsGA3ox9在单性结实中的作用,还对无籽刺梨的果实进行了VIGS分析。结果显示,处理后10天,基因沉默果实的RsGA3ox9表达水平与对照相比显著降低,证实了基因沉默的有效性(图6D)。此外,基因沉默果实的生长受到抑制,直径小于对照。处理后20天,果实完全枯萎,最终脱落(图6E)。这表明RsGA3ox9对无籽刺梨的果实发育具有重要作用。
表1.转基因番茄和野生型的单性结实能力
注:数据为三次生物学重复的平均值±标准差,同一列中不同字母表示差异显著(P<0.05)。
图6.通过番茄过表达和无籽刺梨果实VIGS实验共同验证RsGA3ox9的功能。(A)转基因植株的PCR验证。(B)WT和过表达株系中RsGA3ox9的相对表达水平,OE-4的相对表达水平设为1。(C)野生型和过表达株系在不去雄和去雄处理下的果实表型。(D)对照(CK)和沉默(VIGS)果实中RsGA3ox9的相对表达水平。(E)对照和沉默果实在处理后10天和20天的表型。数据为三次生物学重复的平均值±标准差,同一图中不同字母表示差异显著(P<0.05),星号表示差异极显著(Student's t检验,***P<0.001)。
RsMYBs通过调控RsGA3ox9正向参与单性结实
对RsGA3ox9启动子的顺式作用元件分析显示,在2000bp上游调控区域内存在MYB结合位点(图4C)。基于这一发现,从转录组中鉴定出33个MYB转录因子(TF)家族成员,并对每个TF的TPM水平进行了统计分析。根据分析结果,选择RsMYB3、RsMYB8和RsMYB73在无籽刺梨果实发育阶段进行RT-qPCR分析,它们在RS2和RS3之间表现出显著的差异表达(图7A-C),且与RsGA3ox9基因的表达模式相似。亚细胞定位实验结果显示,这三个转录因子均定位于细胞核。随后构建了重组质粒pHIS2-pro RsGA3ox9、pGADT7-RsMYB3、pGADT7-RsMYB8和pGADT7-RsMYB73,并共转化到Y187酵母菌株中。结果表明,RsMYB3、RsMYB8和RsMYB73均能结合RsGA3ox9启动子,表明这些转录因子可能调控RsGA3ox9的表达(图7D)。
随后,进行了双荧光素酶报告基因实验,以探究这三个转录因子对RsGA3ox9的调控作用。结果表明,RsMYB3、RsMYB8和RsMYB73均正向调控RsGA3ox9的表达,这与它们相应的表达模式一致(图7E-H)。最后,在无籽刺梨果实中对这三个转录因子进行了VIGS实验。在确认它们的沉默效率后,于处理后10天观察果实大小。结果显示,沉默果实的尺寸显著小于对照(图7I)。因此,RsMYB3、RsMYB8和RsMYB73通过正向调控RsGA3ox9的表达,对无籽刺梨的单性结实具有重要作用。
图7.RsMYBs通过正向调控RsGA3ox9的表达促进无籽刺梨单性结实。(A)-(C)分别为RsMYB3、RsMYB8和RsMYB73在四个发育阶段的相对表达分析。(D)酵母单杂交实验显示RsMYB3/RsMYB8/RsMYB73与RsGA3ox9启动子的相互作用。(E)萤火虫荧光素酶/海肾荧光素酶比值分析。(F)-(H)分别为RsMYB3/RsMYB8/RsMYB73与RsGA3ox9启动子相互作用的双荧光素酶实验结果。(I)对照和VIGS沉默后的果实表型。数据为三次生物学重复的平均值±标准差,同一图中不同字母表示差异显著(P<0.05)。RsMYB8-RsMYB73复合物对RsGA3ox9的协同调控
在确认三个转录因子正向调控RsGA3ox9后,进一步探究了它们是否协同作用或拮抗作用。构建了重组质粒pGBKT7-RsMYB3、pGBKT7-RsMYB8和pGBKT7-RsMYB73,并点样到SD-Trp-His-Ade固体培养基上。结果表明,这三个转录因子均未表现出自我激活活性(图8B)。在此基础上,进行了六组酵母双杂交(Y2H)实验,以检测每个转录因子与其他两个转录因子之间的相互作用。结果显示,只有pGADT7-RsMYB8+pGBKT7-RsMYB73和pGADT7-RsMYB73+pGBKT7-RsMYB8组合在添加X-α-gal的SD-Trp-Leu-His-Ade固体培养基上呈现蓝色,表明RsMYB8和RsMYB73之间存在相互作用,RsMYB8-RsMYB73复合物可能协同调控RsGA3ox9的表达。
随后,进一步验证了RsMYB8和RsMYB73之间的相互作用。成功构建了重组质粒nLuc-RsMYB8和cLuc-RsMYB73,转化到农杆菌中,并浸润到烟草叶片中。结果显示,实验组(nLuc-RsMYB8+cLuc-RsMYB73)发出高强度荧光,进一步表明这两个分子可以相互作用(图8E)。此外,对这两个转录因子和RsGA3ox9进行了双荧光素酶报告基因实验,以确定它们的复合物是否会调控RsGA3ox9的表达。结果表明,将RsMYB8和RsMYB73共浸润到烟草中,萤火虫荧光素酶/海肾荧光素酶比值显著升高(图7D;图8F-G),表明RsMYB8-RsMYB73正向调控RsGA3ox9的表达。
图8. RsMYB8-RsMYB73复合物正向调控RsGA3ox9。(A)RsMYB3、RsMYB8和RsMYB73构建到pGADT7和pGBKT7载体中的模式图。(B)RsMYB3、RsMYB8和RsMYB73的自我激活验证。(C)三个转录因子之间相互作用的酵母双杂交实验。(D)RsMYB8和RsMYB73分别构建到nLuc和cLuc载体中的模式图。(E)RsMYB8和RsMYB73的荧光素酶互补实验。(F)RsMYB8和RsMYB73共浸润到烟草中的双荧光素酶报告基因实验。(G)萤火虫荧光素酶/海肾荧光素酶比值分析。数据为三次生物学重复的平均值±标准差,星号表示差异极显著(Student's t检验,***P<0.001)。