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SBB | 同位素标记+土壤理化+宏基因组揭示绿肥翻压对土壤微生物残体的影响
2026-10-12


一、绿肥翻压的概念与方式

绿肥翻压通过输入有机碳和刺激微生物分泌胞外聚合物(EPS),促进土壤团聚体形成[1];它是将豆科、禾本科或十字花科绿肥在生物量高、养分积累多时期直接翻入土壤的培肥措施[2]。豆科绿肥如紫云英、毛叶苕子通过共生固氮提高氮素,碳氮比低、分解快;禾本科如黑麦草、燕麦碳氮比高,利于有机质积累并减少氮素淋失;十字花科如油菜、萝卜根系发达,可活化磷钾、减轻土传病害[3]。翻压时间、深度、水分、温度和碳氮比决定效果:豆科宜在盛花期翻压,禾本科可适当提前。合理翻压能提升微生物活性、促进团聚体形成,是连接作物种植与土壤培肥的重要措施。


二、对土壤碳的影响:短期矿化与长期固存

绿肥翻压输入外源有机碳,易分解组分迅速矿化,引发短期激发效应;而微生物坏死体等可与矿物结合,降低降解性,促进微观碳固存[4]。长期来看,绿肥翻压能提高土壤有机碳、微生物量碳和颗粒有机碳,并促进有机碳与黏土矿物、铁铝氧化物结合形成矿物结合有机碳[5]。整合分析表明,覆盖作物/绿肥可使农田表层有机碳平均累积约0.32Mg C·hm-2·a-1[5];豆科轮作系统也能显著减少碳素损失[6]。因此,绿肥翻压对碳的影响是短期矿化与长期稳定化并存的动态过程。


三、对土壤氮的影响:供应与损失平衡

豆科绿肥通过生物固氮将大气氮转化为有机氮,翻压后矿化为铵态氮和硝态氮,供后茬作物吸收,可替代部分化学氮肥[3]。碳氮比低时氮释放快,若与作物需氮高峰期错位,易导致硝态氮淋失或N₂O排放;碳氮比高时,初期微生物会固持矿质氮,可减少休耕期氮素淋溶[7]。整合分析表明,用覆盖作物绿肥替代裸地休耕可显著降低硝态氮淋失,但管理不当也可能影响后茬产量。绿肥作为氮管理工具,关键是使氮素矿化与作物吸收同步。因此,合理选择绿肥种类、调控碳氮比、确定翻压时间和水分条件,是实现土壤碳氮协同提升的关键。


四、绿肥翻压的介绍及对土壤碳、氮元素的影响主题文献分享
绿肥翻压后延迟淹水促进稻田士壤微生物残体的形成与稳定

SBB | 同位素标记+土壤理化+宏基因组揭示绿肥翻压对土壤微生物残体的影响

期刊名称:Soil Biology and Biochemistry

影响因子:12.2

DOI:10.1016/j.soilbio.2026.110297

检测指标:温室气体(CO2、CH4、N2O)、氨基糖及13C丰度、DOC、MBC、SOC、13C-MBC、13C-SOC;宏基因组和qPCR


1.研究内容

文章通过13C标记紫云英微生态培养实验,研究绿肥翻压后延迟淹水对水稻土碳转化、微生物残体形成和激发效应的影响。试验设4个处理:Control(不施绿肥立即淹水)、DW(不施绿肥延迟5天淹水)、GM(13C紫云英立即淹水)和GMDW(13C紫云英延迟5天淹水),25℃黑暗培养80天。

方法上,用气相色谱测CO2、CH4、N2O浓度,Picarro同位素气体分析仪测13C-CO2和13C-CH4,计算累积排放及原生SOC激发效应;用TOC分析仪和TOC-IRMS测表层水与土壤DOC、13C-DOC,EA-IRMS测MBC、SOC及13C丰度;用GC及GC-C-IRMS测氨基糖含量及其13C-氨基糖,估算细菌、真菌和总微生物残体及残体积累系数NAC;qPCR测16S rRNA和ITS基因丰度,宏基因组测序结合KEGG、CAZy分析碳同化途径和碳降解基因;并用PLS-PM和随机森林解析关系。

结果表明,与GM相比,GMDW使原生SOC激发CO2和CH4分别降低12.4%和97.1%,紫云英来源CO2增加21.0%,CH4降低96.6%;真菌和细菌残体分别提高204.5%和64.0%,NAC提高135.4%。机制是延迟淹水创造短暂好氧期,促进紫云英DOC释放、r策略者(r策略微生物通常具有较高的生长和繁殖潜力,对环境中新增加的易利用资源响应迅速)和真菌生长,加速植物碳向微生物残体转化;随后淹水抑制微生物碳降解基因,增强残体保存。结论:绿肥翻压后延迟淹水可协同增强微生物残体形成与稳定,减少CH4排放和原生SOC损失。


2.样本处理

土壤采自安徽池州长期稻田0-20cm,5块田各3点混匀,过2mm筛,4℃保存;实验前调至60%持水量,25℃黑暗预培养7天。绿肥为13C标记紫云英,标记60天后收获,部分烘干研磨测养分,其余切碎备用。称100g干土入500mL瓶,GM/GMDW每瓶加2g鲜紫云英混匀,Control/DW不加。Control和GM第1天淹水100mL,DW和GMDW第6天淹水,25±2℃黑暗培养80天,每周补水。每处理16重复;气体多时间点采集,第3、13、34、80天破坏性取样,测Eh、pH、DOC、MBC、SOC及13C,部分土样-80℃保存用于DNA/宏基因组,部分风干测氨基糖。


3.研究结果

(1)紫云英来源碳的去向

气体排放与激发效应:GMDW在第1、3天CO₂排放高于GM,但整个培养期CH₄排放低于GM。与GM相比,GMDW使紫云英来源CO2增加21.0%(1.3mg·kg-1),CH4降低96.6%(0.606mg·kg-1);原生SOC激发CO2和CH4分别降低12.4%和97.1%,使原生SOC损失减少29.9%(27.0mg·kg-1 C)。GM激发效应除第34天外多为正,GMDW第50天后转为负激发。

易分解碳:Control和DW的DOC、MBC较稳定;GM和GMDW变化明显。GMDW第13、34、80天表层水和土壤DOC低于GM,第3、13、80天MBC高于GM(第3天+72.2%)。淹水后GMDW紫云英来源DOC和MBC多低于GM,但第3天高于GM,说明好氧期早期分解和微生物同化增强。

残体与NAC:GM与GMDW的细菌残体无显著差异;GMDW显著提高真菌残体,第3、13、80天分别增加30.4、25.5、23.0mg·kg⁻¹。细菌和真菌残体均随时间下降。GMDW的NAC比GM高135.4%,表明延迟淹水提高了植物碳向微生物残体的转化效率。

(2)微生物群落

GMDW第3天细菌Chao1降低,真菌丰度第3、13天分别增加4.6倍和4.4倍。GM与GMDW的细菌、真菌群落组成明显分离。在GMDW条件下,第3天和第34天时r/K策略型个体比例均高于GM(P<0.05;图4G)。

(3)微生物碳同化

DW和GMDW第3天脂肪酸合成、氨基酸代谢基因丰度增加,第13、34天氨基酸和核苷酸代谢增强。整个培养期GMDW高于GM:其中脂肪酸、氨基酸及核苷酸代谢相关的基因丰度分别增加了24.2%、150.6%和55.1%。

(4)碳降解基因

植物来源碳降解基因总体多于细菌、真菌来源。GMDW第3天提高植物碳降解基因(GH10、GH16、GH39等),第13天部分上调、部分下调,第34天多数下降;CBM50在所有时间点均较低。总体上,延迟淹水早期增强植物碳降解潜力,后期抑制微生物碳降解潜力。无绿肥时,延迟淹水反而增加后期微生物碳降解基因丰度。

(5)整合关系

PLS-PM显示:微生物生物量碳和真菌特征正向影响真菌残体;细菌特征和碳降解基因促进细菌残体。激发效应受真菌特征正调控,受碳降解基因和细菌特征负影响。随机森林表明厚壁菌门、变形菌门(细菌r策略者)和子囊菌门(真菌r策略者)是主要贡献者。真菌r策略者与真菌残体正相关,r/K比与激发强度负相关(r策略微生物通常具有较高的生长和繁殖潜力,对环境中新增加的易利用资源响应迅速。K策略微生物通常生长相对缓慢,但更加适应资源有限的环境)。总体上,延迟淹水增强早期DOC释放,刺激真菌生长和碳同化,促进微生物生物量和残体形成,并减少原生SOC激发。

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图1延迟淹水改变气体通量并减少原生SOC激发。(A–B)培养期间土壤CO2和CH4通量的时间动态。(C)不同处理下激发效应(SOC来源CO2+CH4)随时间的变化。(D–E)不同处理下的累积CO2和CH4排放。(F)GM和GMDW处理下的累积激发效应(CO2+CH4)。误差棒表示标准误(n=4)。不同字母表示显著差异(P<0.05)。Control:无紫云英,立即淹水;DW:无紫云英,延迟5天淹水;GM:13C标记紫云英翻压,立即淹水;GMDW:13C标记紫云英翻压,延迟5天淹水。PE:激发效应。

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图2延迟淹水改变易分解碳动态和微生物同化。(A)、(C)和(E)分别代表表层水DOC浓度以及土壤DOC和MBC含量。(B)、(D)和(F)分别代表紫云英来源的表层水DOC浓度、土壤DOC和土壤MBC含量。误差棒表示均值标准误(n=4),不同字母和表示样品间在P<0.05水平差异显著,表示P<0.01,表示P<0.001,Ns表示无显著差异。

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图3延迟淹水增强植物来源碳的微生物残体形成。GM和GMDW处理下的细菌残体(A)、真菌残体(B)、紫云英来源的微生物介导总碳(C)含量、NAC(D)。误差棒表示均值标准误(n=4),不同字母表示样品间在P<0.05水平差异显著,表示P<0.05,表示P<0.01,表示P<0.001。NAC:微生物残体积累系数。

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图4延迟淹水重构微生物群落和生活史策略。不同处理在不同时间下的土壤细菌丰度(A)、Chao1指数(B)、基于Bray-Curtis距离的细菌群落组成(C),以及真菌丰度(D)、Chao1指数(E)、基于Bray-Curtis距离的真菌群落组成(F),以及r/K策略者比(G)。不同处理在第3天、第13天、第34天及三个时期平均的土壤微生物碳分配基因丰度特征(H)。误差棒表示均值标准误(n=4),不同字母表示样品间在P<0.05水平差异显著。Abundance(Z-sources)表示基于KEGG数据库注释的微生物碳分配基因丰度的标准化水平。

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图5延迟淹水暂时改变碳降解基因丰度。(A)不同处理和时间点特定碳降解基因家族的变化。(B)植物、细菌和真菌来源碳降解基因对水分管理的相对响应。Abundance(Z-source)s表示基于CAZyme数据库注释的碳降解基因的标准化丰度,而Total Abundance (Z-sources)表示所有处理和采样时间点每个碳降解基因的累积丰度。

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图6连接水分管理与残体形成及激发效应的微生物途径。(A)和(B)展示了由PLS-PM模型揭示的水分管理、真菌和细菌特征、微生物生物量碳对真菌残体碳、细菌残体碳和激发效应的影响。(C)和(D)展示了由PLS-PM模型揭示的水分管理、碳同化代谢基因(淀粉和糖类、脂肪酸、核酸和氨基酸)、碳降解基因(植物来源碳降解、真菌来源碳降解和细菌来源碳降解)、微生物生物量碳对真菌残体碳、细菌残体碳和激发效应的影响。蓝色箭头表示正路径系数,红色箭头表示负路径系数(P<0.05,P<0.01,P<0.001)。R²表示模型中每个变量的方差解释比例。


意义与局限性:

结果认为绿肥翻压后延迟淹水是一种可兼顾SOC固持和减少CH4排放的实用策略,但效果依赖易分解有机碳输入;局限性包括仅研究低C/N紫云英、实验室微宇宙条件、r/K策略分类为简化分类学代理,未来需田间和多残体类型验证。


4.研究结论

本研究用13C标记紫云英示踪不同水分管理下碳周转。延迟淹水创造短暂好氧阶段,加速植物来源碳转化为微生物生物量,尤其是稳定的真菌残体碳;随后淹水抑制微生物残体降解,降低新形成残体的分解风险。虽然早期可能暂时增强原生SOC激发,但整个培养期CO2和CH4激发显著降低,原生SOC损失减少。

因此,绿肥翻压后延迟淹水可同步实现:①促进植物输入向稳定微生物残体转化;②限制残体后续分解;③减少CH4排放和原生SOC损失。这为水稻土SOC形成提供了一种实用水分管理策略,但结果基于实验室微生态,长期田间效果仍需多年多点试验验证。


参考文献: 

[1]Costa OYA, Raaijmakers JM and Kuramae EE (2018) Microbial Extracellular Polymeric Substances: Ecological Function and Impact on Soil Aggregation. Front. Microbiol. 9:1636.

[2]潘福霞,鲁剑巍,刘威,等(2011)不同种类绿肥翻压对土壤肥力的影响.植物营养与肥料学报17(6):1359-1364.

[3]Thorup-Kristensen K, Magid J and Jensen LS (2003) Catch crops and green manures as biological tools in nitrogen management in temperate zones. Adv. Agron.79: 227-302.

[4]Cheng Z, Radosevich M and Zhuang J (2024) Virus decay and community composition in virus-amended sterile soil under slurry and unsaturated conditions. Soil Biol. Biochem. 193: 109401.

[5]Poeplau C and Don A (2015) Carbon sequestration in agricultural soils via cultivation of cover crops – A meta-analysis. Agric. Ecosyst. Environ.200: 33-41.

[6]Drinkwater LE, Wagoner P and Sarrantonio M (1998) Legume-based cropping systems have reduced carbon and nitrogen losses. Nature.396(6708): 262-265.

[7]Tonitto C, David MB and Drinkwater LE(2006) Replacing bare fallows with cover crops in fertilizer-intensive cropping systems: A meta-analysis of crop yield and N dynamics. Agric. Ecosyst. Environ.112(1): 58-72.